嗯。你都问到这个问题了,具体仪器、操作什么的我就不说了。就说⼀下思路。
强碱条件下⽢油和⼆价铜的络合物显绛蓝⾊,所以利⽤⽢油的这个特性就可以轻松搞定。主要试剂是AR级的⽢油、氢氧化钠、硫酸铜。
向氢氧化钠碱化的⽢油溶液⾥加硫酸铜,⼀定要保证⽢油被完全络合,并且保证多余的⼆价铜都以氢氧化铜沉淀形式存在,但是氢氧化钠也不要加太多。
⽢油铜可见区最⼤吸收波长是在630nm。
先作个标准系列,绘出吸光度-浓度曲线,然后把待测试样吸光度测出来在标准曲线上⼀算,浓度就得到了。氢氧化铜解离出来的铜离⼦在630nm处也有吸收,好在它是⼀个定值,测出来后从每个⽢油的A⾥⾯扣掉就⾏了。
⽢油含量化学⽅法有很多,⽐⾊法,滴定法.⽢油在强碱性条件下,与Cu2+定量形成绛蓝⾊的⽢油铜溶液。根据朗伯-⽐尔定律,溶液吸光度A与吸光物质浓度C成正⽐:A=kC。⽢油配制浓度C1与衍⽣的分析⽢油铜浓度C有如下关系:C=k1C1,k1为稀释系数,则吸光度值与⽢油配制浓度有如下正⽐关系:A=kk1C1+ε,k、k1为常数,ε为系统误差。
先根据吸光度与⽢油配制浓度C1做出关系曲线:,然后确定最佳线性拟合范围,最终得出拟合线性⽅程,程序化后,⽤于⽢油含量的快速测定。[供应] 拜发⽢油检测试剂盒发布⽇期:2010-9-21截⽌⽇期:2009-5-9拜发⽢油检测试剂盒(酶学试剂盒)订货号: 10148270035产品名称:⽢油(Glycerol )产品英⽂名称: Glycerol包装: Ca.3 x 11 tests产品介绍:如下
产品说明: Glycerol (⽤于检测⾷品中的⽢油)酶法分析试剂盒(紫外分光光度法)
RIDASCREEN(产品编号:0 414 433) 30次检测1. 简介
酶法分析试剂盒(紫外分光光度法)此法适⽤于检测⾷品(啤酒、葡萄汁、醋、蜂蜜、酒精、果酒)、化妆品、药品(溶液、栓剂)、纸板、烟草及⽣物制品中的⽢油。2. 原理
⽢油在⽢油激酶的催化下可被ATP磷酸化为3-磷酸⽢油酯,ATP转化为ADP;反应式为GK
Glycerol﹢ATP L-glycerol-3-phosphate﹢ADP
上式中形成的ADP在丙酮酸激酶的催化下可与PEP作⽤下⽣成ATP及丙酮酸酯;反应式为PK
ADP﹢PEP ATP﹢Pyruvate
丙酮酸酯在L-乳酸酯脱氢酶的作⽤下可被NADH还原为L-乳酸酯,NADH被氧化为NAD;反应式为L-LDH
Pyruvate﹢NADH﹢H﹢ L-lactate﹢NAD﹢
被氧化的NADH的量取决于⽢油的量,NADH的吸光度值可在334,340及365nm下测量。3. 试剂盒内容物
----瓶1共有3瓶,每瓶约有2g辅酶及缓冲液的混和物,包括:⽢氨酰⽢氨酸缓冲液, PH约7.4; N ADH约7mg;ATP约22mg;PEP-CHA约11mg;硫酸镁----瓶2约0.4ml悬浮物,包括:
丙酮酸激酶,约240U; L-乳酸酯脱氢酶,约220U----瓶3约0.4ml⽢油激酶悬浮物,约34U
----瓶4为⽢油检测对照溶液(⽢油检测对照溶液可不需要计算结果),此溶液使⽤时不需稀释。(效期见标签)4. 检测溶液的制备(10次)
----取出1瓶瓶1,⽤11ml重蒸⽔溶解,使⽤时此溶液需在20-25℃持续回温约10分钟----瓶 2不需稀释----瓶 3不需稀释5. 操作者应该注意之事项
使⽤前请仔细阅读,中⽂翻译件仅供参考
----瓶1约含500mg碳酸钠,应避免接触⽪肤和呼吸器官,其他⽤于⽢油检测的试剂不具有危险性----实验之后,⽤过的试剂可作为实验室废料处理,但必须在当地法规允许的前提下6. 储存条件
----瓶 1在2-8℃下保存(见标签),溶液1在2-8℃下可保存4天,溶液1使⽤前需回温⾄20-2 5℃----瓶2及3在2-8℃下保存(见标签)7. 样品处理
----直接取⽤⽆⾊,透明,中性的溶液或按稀释表格稀释后进⾏检测,体积为2.000ml----过滤混浊溶液
----除去样品溶液中的⼆氧化碳⽓体
----加⼊氢氧化钠或氢氧化钾来调节酸溶液的PH值约为8
----对于深颜⾊的样品溶液可不需稀释或者⽤PVPP或酰胺配成较⾼浓度的溶液如:1g/100ml
----粉碎或均质固体和半固体样品,⽤⽔抽提或溶解,⽽后过滤,通过Carrez澄清液可脱去其中的混浊物或⾊素----⽤Carrez试剂可脱去样品中的蛋⽩质
----⽤热⽔抽提样品中的脂肪(抽提温度需在脂肪的溶解度之上),冷却后可分离出脂肪,将余下物质转移⾄容量瓶中并加⽔⾄刻度,冰浴15分钟⽽后过滤,热⽔抽提后⽤Carrez溶液澄清8. 过程
1. 波长:340nm,Hg365nm或Hg334nm2. ⽐⾊杯:光径1.0cm3. 温度:20-25℃
4. 最终体积:3.020ml
5. 对照空⽓(光路上⽆⽐⾊杯)或对照⽔读取读数
6. 样品溶液:1-40ug⽢油/检测(体积为0.100-2.000ml样品体积)7. 具体操作见如下表格移液空⽩(ml)样品(ml)溶液1样品溶液重蒸⽔悬浮物2 1.000-2.0000.010 1.0000.1001.9000.010
混和,直⾄前反应完全反应后,约5-7分钟,读取吸光度值A1,⽽后加⼊下列物质:悬浮物3 0.010 0.010
混和,等反应进⾏完全后(约5-10分钟),⽴即读取样品和空⽩的吸光度值A2
如果在15分钟后反应尚未停⽌,则在2分钟的间隔内继续读取读数,直⾄此值不再变化。分别测样品与空⽩的吸光度值差,⽽后⽤样品吸光度值差减去空⽩吸光度值差可以得到如下公式△A=(A1 ―A2)Sample―(A1 ―A2)blank
若想得到⼀个⾜够精确的结果,则测得的吸光度的单位⾄少为0.100单位。
如果吸光度值差△A在334及340nm下测得的值⾼于1.000或在365nm下测得的值⾼于0.500,如此则表明样品溶液中⽢油的浓度较⾼。需根据稀释表格进⾏样品的稀释9. 计算
根据以下公式计算浓度V×MW
C=-----------------------×△A(g/l)ε×d×v×1000V=最终体积(ml)V=样品体积(ml)
MW=被检测物质的摩尔质量D=光径(cm)ε=NADH的消光系数
340nm=6.3(1×mmol-1×cm-1)Hg365nm=3.4(1×mmol-1×cm-1)Hg334nm=6.18(1×mmol-1×cm-1)⽢油含量计算遵循如下公式3.020×92.1
C=----------------------------×△Aε×1.00×0.100×10002.781
=----------------×△A(g⽢油/l样品溶液)ε
如果样品溶液是稀释使⽤的,在计算结果时需乘以稀释系数F。
当分析固体或半固体时,测量前需称⼀定重量配制样品溶液,其结果需按下式计算C ⽢油(g/l样品溶液)
C⽢油 =--------------------------×100(g/100g)W ⽢油(在样品溶液中)10. 检测操作说明
被检样品中⽢油含量在1ug⾄40ug之间。
为了得到⼀个⾜够的吸光度值差,样品溶液的浓度最好稀释在0.04g/L⾄0.4g/L之间。稀释表格每升样品溶液中⽢油估计量⽤⽔稀释稀释倍数﹤0.4g0.4-4g4.0-40g﹥40g -1﹢91﹢991﹢999 1101001000
如果测得的吸光度值△A较低,例如低于0.100,则样品溶液需重新配制,可由下列⼏种解决⽅法1. 可多称出些样品或不要过分稀释。
2. 加⼊到⽐⾊杯中的溶液体积可增加⾄2.000ml,当然为了得到相同的最终体积(样品和空⽩),加⼊的⽔的体积就要相应减少。所加⼊的新溶液的体积在计算时是要考虑进去的。11. 技术信息
加⼊悬浮物2(PK/L-LDH)后等待前反应进⾏完全后是⾮常必要的。12. 特性
此法特异性适于⽢油的检测。13. 灵敏度和检测限
1. 最⼩的吸光分辨率为0.005个吸光单位,相应的最⼤样品体积为
2.000ml,340nm下测量,则样品的⽢油浓度为0.1mg/L;若样品体积为0.100ml,则样品的⽢油浓度为2mg/L。2. 340nm下,吸光度值差为0.020可导出检测限为0.4mg/L,相应的最⼤体积为2.000ml。14. 线性
从1ug⽢油/检品(0.4mg⽢油 /L样品溶液,样品溶液V=2.000ml)到40ug⽢油/检品(0.4g⽢油/L样品溶液,样品V=0.100ml)15. 精确性
⽤同⼀样品溶液做平⾏测定时,其吸光度值差会有0.005⾄0.010的差异,样品体积为0.100ml,340nm 下测量,相应的⽢油浓度约为2-5mg/L;若样品是经过稀释的,则在计算结果时需乘以稀释倍数。16. ⼲扰\\\\信息来源
ATP和PEP的缓慢⽔解同NADH的缓慢氧化均可导致缓慢的蠕变反应;空⽩和样品的吸光度值可不必逐⼀⽴即检测。17. 检测过程中的⼲扰
1. 根据过程中所给定的时间⽢油若能转化完全,则可断定没有⼲扰发⽣。
2. 反应结束后,可加⼊⼀些⽢油重新检测(定性或定量):如果加⼊标准物质后,吸光度值会随之改变,则可断定没有⼲扰发⽣。
3. 操作过程中的错误和⼲扰可通过两个样品体积的平⾏实验测得(如0.100ml和0.200ml):测得的吸光度值差应与样品体积成⽐例关系。
当测定固体样品时,可称取不同质量(如1g和2g)于同⼀100ml容量瓶中,测得的吸光度值差及样品的质量应与样品的体积成⽐例关系。
4. 样品所含物质带来的可能⼲扰可通过加⼊内标来控制:除去样品、空⽩及标准的检测外,样品加检测对照溶液也要检测的,测得的吸光度值差可计算⼲扰。
5. 通过回收试验可测定可能的损失:分别测定加⼊标准与不加⼊标准的样品,在误差范围之内可定量测定附加物。18. Carrez试剂的澄清作⽤
----移取液体样品于盛有60ml重蒸⽔的100ml容量瓶中或称取⾜够重量的样品于100ml容量瓶中----加⼊60ml重蒸⽔
----仔细加⼊5mlCarrez-Ⅰ-溶液(85mM,3.60gK4Fe(CN)6*3H2O/100ml)和5ml Carrez-Ⅱ-溶液(250mM,7.20gZNSO4*7H2O/100ml)
----⽤氢氧化钠调节溶液PH于7.5-8.5,加⼊每⼀溶液后需充分混和,加⽔⾄容量瓶刻度,混和并过滤19. 应⽤举例1.果汁中⽢油的检测
----稀释样品其浓度约在0.4g/L 以下(见稀释表格)----过滤混浊果汁,取⽤透明或淡⾊溶液⽤于检测当分析深⾊果汁时(如:草莓汁和红葡萄汁)需要先脱⾊具体操作
----在10ml 果汁中加⼊0.1g 酰胺粉末或PVPP----搅拌1分钟后过滤
----取透明溶液⽤于检测,该溶液可带有轻微颜⾊2.酒中⽢油的检测
----根据稀释表格将样品进⾏稀释----实际上红酒不需脱⾊也可进⾏检测3.啤酒中⽢油的检测
----取5-10ml 啤酒⽤玻璃棒搅拌约1分钟,除去其中的⼆氧化碳⽓体----根据稀释表格稀释脱去⼆氧化碳⽓体后的样品4.烟草制品中⽢油的检测----充分混合并绞碎样品
----精确称取1g 样品于100ml 容量瓶中
----加⼊约70mL ⽔磁⼒搅拌约1⼩时20-25℃下,⽽后加⽔⾄刻度,混和并过滤----移取25ml 滤液于50ml 容量瓶中
----加⼊5mlCarrez-Ⅰ-溶液,5ml Carrez-Ⅱ-溶液及10ml 氢氧化钠溶液,在加⼊每⼀溶液后均需充⼈混和----加⽔⾄刻度混和并过滤,取滤液⽤于检(0.100ml-0.500ml )5.化妆品中⽢油的检测
6.发酵产品及⽣物培养基中⽢油的检测
----置样品(可先经过离⼼)于80℃⽔浴中15分钟以停⽌酶的反应----离⼼并取上层溶液(可根据稀释表格稀释)⽤于检测----另外可⽤⾼氯酸或Carrez 溶液脱除蛋⽩质琼脂培养基需先均质,⽽后按以上⽅法进⾏操作。
名称:⽢油检测试剂盒编号:EK-GCROL货号:100001001Cas No :70购买:
Glycerol Assay Kit(70 次测定)简介:
⽢油是⼀种⾮常重要的物质,⼴泛的应⽤于⼯业⽣产中,在⾷品⼯业中,常被作为保湿剂、增⾹剂和增⾊剂等使⽤,以改良⾷品的质量。⽢油是酿酒酵母发酵过程中的副产物,也是灰质葡萄孢新陈代谢过程中的⼀个重要产物,⽢油是⾼品质果酒的⼀个成分,⾼品质的葡萄汁中不含有(或只含有痕量或微量)⽢油,浓度⼤约为1%(v/v),若葡萄汁中含有⽢油则意味着产品中使⽤了品质不好的原料。⽢油也常常作为润滑剂⽤在洗涤液、乳酪和⽛膏中,在制烟⼯业中,通过通常是预先向烟叶上喷洒⽢油以保障不会粉碎的⽬的。原理:
⽢油在⽢油激酶(GK)的作⽤下被磷酸化,消耗ATP转化成L-3磷酸⽢油(L-glycerol-3-phosphate)。(1) Glycerol + ATP (GK) L-glycerol-3-phosphate + ADP
上式中形成的ADP在丙酮酸激酶(PK)的催化下可与PEP作⽤,⽣成ATP及丙酮酸酯(2) ADP + PEP (PK) ATP + pyruvate
丙酮酸酯在L-乳酸酯脱氢酶(L-LDH)的作⽤下可被NADH还原为L-乳酸酯,NADH被氧化为NAD(3) Pyruvate + NADH + H+ (L-LDH) L-lactate + NAD+
被氧化的NADH的量取决于⽢油的量,NADH的吸光度值可在340下测量。特异性, 灵敏度, 测量范围和精确度:
该实验⽅法是专门⽤于测定⽢油含量的,对于纯⽢油(⽔中的游离⽢油)⼏乎可以100%检测到。
最⼩可调吸光光度为0.010个吸光单位,样品体积为2.00 mL,若在340nm下检测,此时的⽢油浓度为0.171 mg/L。如果最⼩可调吸光光度为0.020吸光光度,样品体积为2.00 mL,在340nm下检测,此时的⽢油检测线为0.342 mg/L。
该实验的测量范围为0.8ug-35ug⽢油,同⼀样品分别进⾏两次测定,其吸光度值会有0.005-0.010吸光单位的变化,对于样品体积为2.00 mL,此时的⽢油浓度⼤约在0.086-0.171 mg/L之间,如果样品是经过稀释的,在计算结果时候需要乘以相应的稀释系数(F),如果在样品制备阶段,样品的重量是被称量的,如:10g/L,0.02-0.05g/100g的细微差别能够被分辨。⼲扰:
如果⽢油在试验规定的时间内(⼤约5分钟)完成转化过程,通常认为没有⼲扰发⽣,然⽽,通过向已完成反应的试管中添加⽢油(0.1mL中添加20ug),进⼀步的实验表明,吸光度值还会进⼀步降低。
利⽤附带的内部的标准质控可以对⼲扰物质进⾏鉴定。定量回收试验:通过向样品中添加标准质控,计算样品在处理和提取时的损失。如:在最初的提取步骤时添加⼀定量的⽢油。安全性:
⽢油测定所使⽤的试剂没有有毒物质。然⽽浓缩缓冲液中含有作为防腐剂⽤的叠氮化钠(0.02 % w/v),需要按照实验室安全操作规程进⾏试验。试剂盒:
Megazyme⽢油含量测定试剂盒可以进⾏70次的测定试验,并提供有全部的试验⽅法:瓶1: Tris/HCl 缓冲液 (30 mL, 1.0 M, pH 7.4) +氯化镁(30 mM)+叠氮化钠(0.02 % w/v)稳定性> 2年,4°C保存。
瓶2: 药⽚(14个) 含有NADH+ATP +PEP稳定性> 2年,4°C保存。
瓶3: 丙酮酸激酶(600 U/mL)+L-乳酸酯脱氢酶(550 U/mL)悬浮液1.5mL稳定性> 2年,4°C保存。
瓶4: ⽢油激酶悬浮液(1.5 mL, 85 U/mL)稳定性> 2年,4°C保存。
瓶5: ⽢油质控标准液(5 mL, 0.20 mg/mL)+ 0.02 % (w/v)叠氮化钠稳定性> 2年,4°C保存。试剂制备:
1. 使⽤瓶1作为稀释液。
2. 1.1 mL Tris/HCl缓冲液溶解瓶2中1⽚药⽚,⼤约1-2分钟,⾜够进⾏5次试验。⼀旦药⽚溶解,NADH 吸光度会随着时间的延长⽽降低,不过溶解的药⽚保存在4°C下⼤约可以使⽤4天,或保存于-20°C下⼤约可以使⽤4周的时间。
注意: 在打开瓶⼦前,⾸先需要将瓶⼦中的药⽚恢复到室温,避免潮⽓可能吸附到药⽚上,⽽影响药⽚的稳定性。
3 & 4. 准备瓶3和瓶4种的溶液,第⼀次打开前,需要充分晃动瓶⼦,不要让酶吸附在橡⽪塞上,然后垂直存放好瓶⼦。每次使⽤前还需要充分混合其中的内溶物。5. 准备瓶5溶液。
注意:当您怀疑分光光度计的准确性或怀疑样品中的物质抑制了试验,再使⽤⽢油标准质控溶液进⾏测定,通过测量NADH的消光系数⽽计算⽢油的浓度。实验需要的设备:
1. 容量瓶(50 mL, 100 mL和500 mL).2. ⽐⾊杯 (1 cm,3.0 mL).3. 微量移液器4. 连续分配器5. 分析天平
6. 分光光度计 340 nm.7. 漩涡混合器8. 定时钟
9. Whatman No.1 (9 cm)滤纸操作步骤:波长: 340 nm
⽐⾊杯: 1 cm light path (玻璃或塑料)温度: 25°C最终体积: 2.34 mL
样品溶液: 每个⽐⾊杯中含有0.8-35ug⽢油(存在于0.10-2.0 mL样品溶液中)空⽩调 0:相对于空⽓或者⽔溶液空⽩管样品管蒸馏⽔(~ 25°C)样品
溶液2(NADH/ATP/PEP/Tris/HCl)悬浮液3(PK/L-LDH) 2.10 mL—0.20 mL0.02 mL 2.00 mL0.10 mL0.20 mL0.02 mL
混合*,在反应⼤约4分钟后读取溶液(A1)的吸光度值(前反应完成**),在添加下列试剂后继续进⾏试验悬浮液4(GK) 0.02 mL0.02 mL
混合*,在停⽌反应后(⼤约5分钟)读取溶液(A2)的吸光度值,如果反应没停⽌,在间隔2分钟后,再次测量,直到最终的吸光度值不再变化。
* ⽤塑料棒搅拌或⽤试管塞封闭严实后轻轻颠倒** 必须在等到前反应完成后再添加悬浮液3(PK/L-LDH)计算:
分别对空⽩管和样品管两次测得的吸光度值进⾏相减(A1-A2),这样就获得了ΔAglycerol,按照常规ΔAglycerol 的数值⾄少要在0.100个吸光单位,才能获得满意的试验结果。⽢油的含量可以依照下列公式计算:C = V x MW x ΔAglycerol [g/L]εx d x v注释:
V = 最终体积 [mL]MW = ⽢油分⼦量 [g/mol]ε = NADH在340 nm下的消光系数= 6300 [l x mol-1 x cm-1]d = ⽐⾊管管径 [cm]v = 样品体积 [mL]简化公式:
C = 2.34 x 92.1 x ΔAglycerol [g/L]6300 x 1 x 0.10
= 0.3421 x ΔAglycerol [g/L]
如果样品在制备过程中被稀释了,计算结果还必须乘以稀释系数F。当被分析的物质为固体或半固体时,⽢油含量(g/100 g)依照下列公式计算:⽢油含量
= C⽢油 [g/L 样品溶液] x 100 [g/100 g]样品重量 [g/L 样品溶液]
注意: 使⽤Mega-CalcTM,该计算⽅法可以被简化。制备样品:1. 稀释样品.
⽐⾊杯中(如:分析0.1 mL的样品)的⽢油总含量必须在0.8-25ug之间,因此样品溶液必须被充分的稀释到浓度在0.008 -0.35g/L之间。
估计浓度(g/L) 蒸馏⽔稀释稀释系数F< 0.350.35-3.53.5-35> 35 不⽤稀释1 + 9
1 + 991 + 999 1101001000
如果ΔAglycerol 的数值太低(如< 0.100),可以增加称量的样品量或不要进⾏过分稀释,也可以增加⽐⾊管中的样品量到2.00mL,只要确保样品和蒸馏⽔的总量在2.10 mL即可。2. 净化样品.a. 溶液:
Carrez I溶液:溶解3.60 g亚铁氰化钾{K4[Fe(CN)6].3H2O} (Sigma cat. no. P-9387)到100 mL的蒸馏⽔中,室温保存。Carrez II溶液:溶解7.20 g硫酸锌(ZnSO4.7H2O) (Sigma cat. no. Z-4750) 到100 mL的蒸馏⽔中,室温保存。氢氧化钠(NaOH, 100 mM):溶解4 g NaOH到1 mL的蒸馏⽔中,室温保存。b. 步骤:
吸取液体样品到含有⼤约60 mL蒸馏⽔的100 mL容量瓶中,或称取⾜够量的样品到含有⼤约60 mL蒸馏⽔的100 mL容量瓶中,缓慢的加⼊5mL Carrez I 溶液和10mL NaOH溶液(100 mM),然后充分混合,补液⾄刻度线,混合并过滤。3. 总则.
(a) 液体样品: 清澈的或稍有些颜⾊的,pH⼤约为中性的液体样品可以直接检测。
(b) 酸性样品: 如果样品为> 0.1 mL的未被稀释的酸性样品(如葡萄酒或果汁),必须⽤2 M NaOH调节pH到⼤约7.4,然后在室温中孵育30分钟。
(c) 含⼆氧化碳样品: 样品中含有⼤量的⼆氧化碳,如:啤酒,必须⽤2 M NaOH调节pH到⼤约7.4,并缓慢的⽤玻璃棒搅拌。(d) 有颜⾊的样品: 测试中附加样品空⽩,如:样品中不含有GK,在这种情况下,样品必须附加样品空⽩。
(e) 重颜⾊的样品: 如果未经稀释的样品颜⾊⾮常深,需要向每10mL的样品中加⼊0.2g聚⼄烯聚吡咯烷酮(PVPP),充分混合5分钟,然后⽤Whatman No. 1滤纸过滤。
(f) 固体样品: 均质或粉碎固体样品,然后加⼊到蒸馏⽔中,并过滤。
(g) 样品含有脂肪: 需要⽤超过脂肪沸点的⽔进⾏提取,如:将100mL容量瓶加热到60°C,然后恢复⾄室温,并补液⾄刻度线,放置冷藏箱中15-30分钟,过滤,弃去最初的⼏mL滤液,选择澄清的或稍有些乳⽩⾊的悬浮液进⾏测试。也可以选择使⽤Carrez 溶液进⾏澄清。
(h) 样品中含有蛋⽩: 使⽤Carrez 溶液去除样品中的蛋⽩。样品处理事例:
(a) 测定葡萄酒中的⽢油.
通常情况下,测定⽩/红葡萄酒中的⽢油含量都不需要对样品进⾏处理,只需要依照稀释表格进⾏稀释即可。如:按照1:20倍稀释0.1mL的样品。(b) 测定啤酒中的⽢油含量.
使⽤玻璃棒进⾏充分的搅拌,去除样品中的⼆氧化碳,然后进⾏稀释即可测定。如:按照1:5倍稀释0.1mL 的样品。(c) 测定果汁和相关饮料中的⽢油含量
稀释样品中的⽢油含量⾄少到0.35 g/L,澄清的、中性的样液可以直接进⾏测试,不需要进⾏特殊处理。浑浊的液体稀释前⾸先需要进⾏过滤。
有颜⾊的样品溶液通常在稀释到适当的⽢油浓度即可测定。然⽽,如果要测定不经稀释的样品液中的⽢油浓度,需要依照下列步骤进⾏脱⾊:
⽤1 M NaOH调节25mL样品溶液的pH⼤约⾄7.4,然后⽤蒸馏⽔补液⾄50 mL,加⼊0.5g PVPP,充分搅拌5分钟,然后⽤Whatman No. 1滤纸过滤。使⽤澄清的或稍有些颜⾊的提取液进⾏测试。没有必要进⼀步稀释,可以直接进⾏测定。(d) 测定烟草制品中的⽢油含量.
将样品粉碎成⼤约0.2 mm的⼩颗粒,准确的称量1g样品,放⼊到100 mL容量瓶中,加⼊⼤约60 mL蒸馏⽔,⽤磁⼒搅拌器在20-25°C下充分搅拌1⼩时,然后⽤蒸馏⽔补液⾄刻度线,混合并过滤。移取25 mL 滤液到50mL容量瓶中,继续加⼊5 mLCarrez I 溶液、5 mL Carrez II 溶液和10 mL NaOH溶液(100 mM),每加⼀种溶液都要充分混合,然后补液⾄刻度线,混合并⽤Whatman GF/A玻璃纤维滤纸过滤,没有必要进⼀步稀释,可以直接进⾏测定。(e) 测定肥皂中的⽢油含量.
准确称取1 g粉碎的肥皂粉末,加⼊50mL 0.1M HCl ,⽤热磁⼒搅拌器充分搅拌⾄沸腾,将溶液转移⾄100 mL容量瓶中,然后添加30mL 0.1M HCl继续搅拌提取,待温度降⾄20-25°C后⽤蒸馏⽔补液⾄刻度线,
将容量瓶放置于冷藏室15分钟,⽤Whatman GF/A玻璃纤维滤纸过滤,取25 mL滤液,加⼊2 mL 2 M Tris/HCl 缓冲液(pH7.4,⾃备),⽤1M NaOH调解pH⼤约⾄7.4,补液⾄50 mL,直接对该溶液(或进⼀步稀释)进⾏测定。(f) 测定⽛膏中的⽢油含量.
准确称取1 g⽛膏样品,加⼊70 mL蒸馏⽔,在70°C下充分搅拌30分钟,然后离⼼(~ 3,000g 10分钟),再次洗涤悬浮液中的⼩球2次—加⼊50 mL蒸馏⽔,重复搅拌和离⼼步骤,补液⾄250 mL并过滤,可以按照1:3倍稀释0.1 mL滤液,进⾏测定。参考⽂献:
1. Spinella, C. I. (1966). Modified enzymatic procedure for the routine determination of glycerol and triglycerides in plasma. J.Lipid Res. 7,167-169.
2. Klopper,W. J.,Angelino, S.A. G. F.,Tuning, B. & Vermeire, H.A. (1986). Organic acids and glycerol in beer. J. Inst. Brew. 92,225-228.
3. Michal, G. (1976). Enzymatische analyse in der pharmazie. Acta Pharmaceutica Technologica, Suppl. 1,S, 151-162.4. Pfandl,A. & Menschig, D. (1984). Ein beitrag zur enzymatischen glycerinund ethanol-bestimmung. Pharm. Ind. 46, 403-407.
5. Wieland, O. H. (1988). Glycerol. In Methods of Enzymatic Analysis (Bergmeyer, H. U., ed.), 3rd ed., Vol.VI, pp. 504-510,VCH Publishers (UK) Ltd., Cambridge, UK.
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