Journal of China Medical University Vol.49 No.1 Jan. 2020
·31·
· 论著 ·二氮嗪对氧糖剥夺后BV-2细胞凋亡及caspase-3表达的影响
付昱,李昕,韩冬,郭靖宇,王艺霖,张鸿
( 中国医科大学附属盛京医院神经内科,沈阳 110004)
摘要 目的 探究ATP敏感性钾通道( KATP) 开放剂二氮嗪对氧糖剥夺/复氧后小胶质细胞(BV-2细胞)凋亡的影响及其机制。方法 体外培养BV-2细胞系,以OGD/R、二氮嗪、5-羟葵酸( 5-HD) 分别进行处理,分为A组( 正常对照组)、B组( 氧糖剥夺/复氧组)、C组( 氧糖剥夺/复氧+二氮嗪组) 和D组( 氧糖剥夺/复氧+二氮嗪+5-HD组),采用Annexin V-FITC/PI双染流式细胞术检测细胞凋亡率,以及免疫细胞荧光染色和免疫印迹实验检测cleaved caspase-3蛋白的表达,观察分析氧糖剥夺/复氧后BV-2细胞的保护作用。结果 氧糖剥夺后B、C、D组细胞凋亡率升高,C组低于B、D组,差异有统计学意义( P < 0.01)。B、D组cleaved caspase-3蛋白表达增加,A、C组表达减少,C组略高于A组,A、C组与B、D组比较差异均有统计学意义( P < 0.01)。结论 二氮嗪可以抑制氧糖剥夺/复氧后BV-2细胞凋亡,可能是通过减少caspase-3的活化实现。关键词 二氮嗪; BV-2细胞; 氧糖剥夺; caspase-3
中图分类号 R743.3 文献标志码 A 文章编号 0258-4646 (2020) 01-0031-04网络出版地址 http://kns.cnki.net/kcms/detail/21.1227.R.20191211.1423.034.html DOI:10.12007/j.issn.0258‐4646.2020.01.007
Effects of diazoxide on apoptosis and caspase-3 expression after oxygen-glucose
deprivation in BV-2 cells
FU Yu,LI Xin,HAN Dong,GUO Jingyu,WANG Yilin,ZHANG Hong
( Department of Neurology,Shengjing Hospital,China Medical University,Shenyang 110004,China)
Abstract Objective To investigate protective effects and mechanism of diazoxide on apoptosis in BV-2 cells after oxygen-glucose dep-rivation (OGD) . Methods BV-2 cells were cultured in vitro and subject to OGD,diazoxide treatment,and 5-hydroxylevanic acid (5-HD) treatment. BV-2 cells were divided into group A (normal control group),B (OGD group),C (OGD + diazoxide group),and D (OGD + di-azoxide + 5-HD group) . Apoptosis rate was detected by flow cytometry and immunofluorescence with annexin V-FITC/propidium iodide (PI) double-staining. Western blotting was used to detect expression of cleaved caspase-3 protein. Protective effects of diazoxide on BV-2 cells after OGD were observed. Results Apoptosis in group B,C,and D increased after OGD,with significant differences between group C,B,and D (P < 0.01) . Expression of cleaved caspase-3 protein in group B and D increased,while expression in group A and C decreased. Expression in group C was slightly higher than in group A. There were significant differences between all 4 groups (P < 0.01) . Conclu-sion Diazoxide could inhibit apoptosis in BV-2 cells induced by OGD. The mechanism may involve reduction of caspase-3 protein acti-vation.
Keywords diazoxide; BV-2 cell; oxygen-glucose deprivation; caspase-3
ATP敏感性钾通道 (ATP-sensitive potassium channels,KATP) 开放剂可以对脑缺血/再灌注损伤中的神经元及血脑屏障相关蛋白发挥保护作用[1-2],但对于小胶质细胞的作用及相关信号通路仍不清楚。二氮嗪是一种线粒体KATP开放剂,研究[2]表明
基金项目:辽宁省自然科学基金 (20170541053);沈阳市科技计划
(18-014-4-82)
作者简介:付昱 (1992-),男,医师,硕士. 通信作者:张鸿,E-mail:zhangh.7211@163.com收稿日期:2019-01-08网络出版时间:2019-12-12 8:45
二氮嗪可以在大鼠脑缺血/再灌注模型中对神经细胞及血脑屏障相关蛋白起保护作用。BV-2细胞是小鼠小胶质细胞,常用作小胶质细胞模型,用无糖血清和三气培养箱创造氧糖剥夺条件对BV-2细胞进行处理,可模拟缺血缺氧状态下的细胞微环境。本研究拟通过氧糖剥夺诱导的BV-2细胞探讨二氮嗪对缺血缺氧状态下小胶质细胞的影响。1 材料与方法1.1 主要仪器及试剂
·32·HERA Cell 150 三气培养箱 (美国 Billups-Roth-enberg 公司),FACScalibur流式细胞检测分析仪 (美国 BD 公司 ),Eclipse NI正置荧光显微镜+图像采集系统 (日本尼康公司 ),RPMI1640培养基、新生胎牛血清、无糖DMEM培养基 (美国Gibco公司),AV/PI凋亡试剂盒 (苏州宇恒生物科技有限公司),caspase-3抗体、FITC标记二抗 (美国Proteintech Group公司)。1.2 方法
1.2.1 细胞培养:小胶质细胞系BV-2细胞用含有20%胎牛血清的RPMI1640完全培养基在37 ℃、5% CO2培养箱中培养,每48 h更换培养基1次。1.2.2 分组建模及给药:将4个培养皿的BV-2细胞传代2 d后,分为A、B、C、D 4组。A组为对照组;B组更换为无糖无血清培养基并移至HERA Cell 150 三气培养箱中进行氧糖剥夺建模,持续充以10%CO2和90%N2,在此条件下培养6 h后复氧,更换为常氧、原培养液条件下再培养24 h;C组在氧糖剥夺处理之前给予二氮嗪100 μmol/L;D组在氧糖剥夺处理之前给予二氮嗪100 μmol/L+5-羟葵酸 (5-hydroxydecanoate,5-HD) 100 μmol/L。
1.2.3 流式细胞术检测BV-2细胞的凋亡:用含0.25%EDTA的胰酶对BV-2细胞进行消化处理,每样本细胞数在1×105~5×105范围内,收集细胞后在高速冷冻离心机中以300 g离心5 min,弃去上清培养液。加入PBS 500 μL洗涤2次,再以300 g离心5 min。弃去上清培养液后,加入100 μL流式缓冲液进行重悬,采用AnnexinV-FITC/PI双染法,每管先加入5 μL AnnexinV-FITC,混匀后再加入2 μL PI工作液振荡混匀,所有操作均在冰上进行。于室温下避光孵育15 min,1 h内上流式细胞仪检测。
1.2.4 免疫细胞荧光染色检测cleaved caspase-3蛋白表达:待培养皿中的BV-2细胞培养至对数生长期,以104/孔铺于6孔板,待细胞生长至镜下视野的70%~80%,PBS洗3次,每次3 min。用4%多聚甲醛在-20 ℃固定20 min,PBS洗3次,每次3 min。5%BSA室温封闭1 h。加入caspase-3一抗 (稀释1︰100), 在湿盒中4 ℃过夜。PBS洗3次,每次3 min。加二抗 (PBS稀释1︰100), 室温避光孵育4 h,PBS洗3次,每次3 min。加入DAPI染色剂200 μL,室温避光孵育5 min。PBS洗4次,每次5 min。加入50 μL抗荧光淬灭剂封片,利用荧光显微镜观察蛋白定位并测定蛋白平均
中国医科大学学报 第49卷
光密度值 (IOD)。
1.2.5 免疫印迹实验检测cleaved caspase-3蛋白表达情况:收集BV-2细胞至EP管,用RIPA提取总蛋白,BCA蛋白定量,高温变性。各组取40 g蛋白行10%SDS-PAGE凝胶电泳,110 V、86 mA恒压转印至PVDF膜。5 %脱脂奶粉常温封闭2 h。加入一抗 (an-ti-cleaved caspase-3 稀释1︰1 000及anti-β-actin 稀释1︰5 000) 4 ℃摇床过夜。加入二抗 (1︰200与HRP2结合) 孵育2 h,ECL染色,凝胶图像分析仪扫描图像,用Image J软件分析蛋白条带灰度,计算目的蛋白灰度值/内参蛋白灰度值。1.3 统计学分析
应用SPSS 22.0软件进行统计学分析,数据以
x -±s表示,组内两两比较采用独立样本t检验,组间
比较采用单因素方差分析,P < 0.05为差异有统计学意义。2 结果
2.1 各组BV-2细胞凋亡情况
流式细胞术结果显示,B、C、D组凋亡率均有升高,与A组比较差异均有统计学意义 (P < 0.01);B、D组凋亡率升高较C组显著,差异有统计学意义 P < 0.01),B组和D组比较差异无统计学意义 (P > 0.05)。见图1。
2.2 cleaved caspase-3蛋白的表达情况
免疫荧光染色和免疫印迹检测结果显示,4组细胞内均可见cleaved caspase-3蛋白表达。B、C、D组表达均高于A组,但C组低于B、D组,差异均有统计学意义 (均P < 0.01) ),B组和D组比较无统计学差异 P > 0.05)。见图2~3。3 讨论
卒中是全球成人致死致残的主要病因,随着我国经济水平不断提高,卒中已逐步成为我国仅次于心脏疾病和肿瘤的第三大致死病因。虽然对于卒中发生的分子和细胞机制的了解越来越深入,但是目前仍然没有非常有效的治疗药物。
脑内的神经元、星形胶质细胞、血管内皮细胞、细胞外基质、周细胞以及小胶质细胞等组成神经血管单元[3]。神经血管单元中的小胶质细胞作为“中枢神经系统的巨噬细胞”,在神经系统疾病中的作
((第1期 付昱等. 二氮嗪对氧糖剥夺后BV-2细胞凋亡及caspase-3表达的影响10410310210
1
·33·
104103102
Apoptotic rate/%10
1
50403020100
A
B
C
D
*
*
PI1000
10 101 102 103 104
AV FITC
410103102101
1000
10 101 102 103 104
AV FITCHD) group. *P < 0.01 vs control group.PIPIPI1000
10 101 102 103 104
AV FITC
410103102101
1000
10 101 102 103 104
AV FITC
*
A,control group;B,oxygen-glucose deprivation/reperfusion (OGD/R) group;C,OGD/R+diazoxide group;D,OGD/R+diazoxide+5-hydroxydecanoate (5-图1 各组BV-2细胞凋亡率
Fig.1 Apoptosis rate of BV-2 cells in different groups
Cleaved caspase-3 protein expression200150
*
*
*
100500
A
B
C
D
A,control group;B,OGD/R group;C,OGD/R+diazoxide group;D,OGD/R+diazoxide+ 5-HD group. *P < 0.01 vs control group. Bar=50 μm.
图2 各组BV-2细胞cleaved caspase-3蛋白的表达(免疫荧光染色)
Fig.2 Expression of cleaved caspase-3 protein in different groups(immunafluorescence)
用一直为众多学者所关注[4-6],特别是小胶质细胞在脑缺血/再灌注损伤中的反应,被作为一个重要的治疗靶点加以研究[7-8]。前期研究[9-11]显示,KATP开放剂吡那地尔能够明显减轻大鼠脑缺血/再灌注后的神经功能损伤,减小梗死区体积,并通过激活PI3K/Akt/Bcl-2通路,影响神经细胞的凋亡,以此对脑组织起到保护作用。
多项研究[12-13]表明,KATP开放剂二氮嗪能够降
低病理条件下的神经元PC12细胞的凋亡率。也有文献[14]报道有药物能够减少氧糖剥夺后BV-2小胶质细胞炎性细胞因子的释放以及凋亡的发生,但KATP开放剂二氮嗪对氧糖剥夺后小胶质细胞的作用仍不清楚。本研究使用流式细胞术和AnnexinV-FITC/PI双染法检测了小胶质细胞系BV-2细胞的凋亡率,结果发现二氮嗪可以减少氧糖剥夺/复氧后的BV-2细胞的凋亡。caspase-3蛋白是细胞凋亡的重要相关
·34·
Cleaved caspase-3 protein/β-actin IOD2.01.51.00.50.0
*
*
中国医科大学学报 第49卷
A
caspase-3β-actin
B C D
*
A B C D
A,control group;B,OGD/R group;C,OGD/R+diazoxide group;D,OGD/R+diazoxide+5-HD group. *P < 0.01 vs control group.
图3 各组cleaved caspase-3蛋白的表达水平(Western blotting)
Fig.3 Expression levels of cleaved caspase-3 protein in different groups(Western blotting)
蛋白,通常被活化剪切为P17与P12 2种片段,引起凋亡发生[15-16]。本研究结果表明,二氮嗪能减少缺氧/复氧后BV-2细胞中caspase-3的活化,而5-HD作为一种KATP阻断剂能降低二氮嗪对caspase-3的活化。证明KATP开放剂有可能是通过减少caspase-3蛋白的活化而发挥其对缺氧/复氧后的小胶质细胞的保护作用。
综上所述,本研究结果提示,KATP开放剂二氮嗪可能通过减少caspase-3的活化影响小胶质细胞的凋亡,从而对脑缺血/再灌注后的脑组织损伤发挥保护作用。但是,有关小胶质细胞在病理条件下对神经血管单元其他组成部分的作用以及KATP通道对脑缺血后神经血管单元的影响,有待进一步探讨。
参考文献:
[1] WANG W,LI J,MENG X,et al. Effect of electronic stimulation at
Neiguan (PC 6) acupoint on gene expression of adenosine triphos-phate-sensitive potassium channel and protein kinases in rats with myocardial ischemia [J]. J Tradit Chin Med,2015,35 (5):577-582. DOI:10.1016/s0254-6272 (15) 30142-4. [2] ZHANG H,SONG LC,LIU YY,et al. Pinacidil reduces neuronal ap-optosis following cerebral ischemia-reperfusion in rats through both
mitochondrial and death-receptor signal pathways [J]. Neurosci Bull,2007,23 (3):145-150. DOI:10.1007/s12264-007-0021-2. [3] DEL ZOPPO GJ. Stroke and neurovascular protection [J]. N Engl J
Med,2006,354 (6):553-555. DOI:10.1056/NEJMp058312. [4] GALATRO TF,HOLTMAN IR,LERARIO AM,et al. Transcriptomic
analysis of purified human cortical microglia reveals age-associated changes [J]. Nat Neurosci,2017,20 (8):1162-1171. DOI:10.1038/nn.4597 [5] ARNOLD T,BETSHOLTZ C. Correction:the importance of microglia
in the development of the vasculature in the central nervous system [J]. Vascular Cell,2013,5 (1):12. DOI:10.1186/2045-824X-5-12. [6] PEREGO C,FUMAGALLI S,DE SIMONI MG. Temporal pattern of
expression and colocalization of microglia/macrophage phenotype
markers following brain ischemic injury in mice [J]. J Neuroinflam-mation,2011,8:174. DOI:10.1186/1742-2094-8-174. [7] RAJAN WD,WOJTAS B,GIELNIEWSKI B,et al. Dissecting func-tional phenotypes of microglia and macrophages in the rat brain after
transient cerebral ischemia [J]. Glia,2019,67 (2):232-245. DOI:10.1002/glia.23536. [8] WANG LN,WANG XL,LI TT,et al. 8e protects against acute cere-bral ischemia by inhibition of PI3Kγ-mediated superoxide generation
in microglia [J]. Molecules,2018,23 (11):E2828. DOI:10.3390/molecules23112828 [9] 张鸿,刘艳艳,马英,等.ATP敏感性钾通道开放剂对脑缺血/再灌
注损伤的保护作用及信号转导机制研究[J].中国危重病急救医学,2007,19 (4):221-224,[10] 张鸿,贾春红,赵丹阳,等. ATP敏感性钾通道开放剂通过PI3K/Akt信
号通路对缺血缺氧诱导PC12细胞凋亡发挥保护作用[J]. 解剖科学进展,2011,17 (1):27-32. DOI:10.16695/j.cnki.1006-2947.2011.01.023. [11] 王占强,贾春红,鲁杨,等. 二氮嗪对氧糖剥夺后PC12细胞凋亡
及对Bcl-2蛋白的影响[J]. 中国药理学通报,2010,26 (7):930-933.[12] 巴茂文,孔敏,于国平,等. 二氮嗪联合环孢菌素A减轻突触核蛋
白片段对PC12细胞凋亡的作用机制[J]. 中华老年心脑血管病杂志,2013,15 (9):976-978.DOI:10.3969/j.issn.1009-0126.2013.09.023.[13] KONG M,BA MW. Protective effects of diazoxide against Aβ25-35-induced PC12 cell apoptosis due to prevention of endoplasmic retic-ulum stress [J]. Neuroreport,2012,23 (8):493-497. DOI:10.1097/WNR.0b013e3283537615. [14] ZHOU JM,GU SS,MEI WH,et al. Ginkgolides and bilobalide pro-tect BV2 microglia cells against OGD/reoxygenation injury by inhib-iting TLR2/4 signaling pathways [J]. Cell Stress Chaperones,2016,
21 (6):1037-1053. DOI:10.1007/s12192-016-0728-y. [15] KAVANAGH E,RODHE J,BURGUILLOS MA,et al. Regulation of
caspase-3 processing by cIAP2 controls the switch between pro-in-flammatory activation and cell death in microglia [J]. Cell Death Dis,2014,5:e1565. DOI:10.1038/cddis.2014.514. [16] YAO LL,LU PF,LING EA. Melatonin suppresses toll like receptor
4-dependent caspase-3 signaling activation coupled with reduced production of proinflammatory mediators in hypoxic microglia [J]. PLoS One,2016,11 (11):e0166010. DOI:10.1371/journal.pone.0166010.
( 编辑 王又冬)
因篇幅问题不能全部显示,请点此查看更多更全内容