大鼠大脑皮层星形胶质细胞原代培养及传代
南京军区总院神经内科实验室 许丽丽 2012-12-01
一、试剂
1) Poly-L-lysine(Sigma,P2636) 2) DMEM(Invitrogen,11995-065) 3) FBS(Invitroge,10099-141)
4) HBSS, no Calcium, no Magnesium(Invitrogen, 14170-112) 5) 0.25% Trypsin-EDTA (Invitrogen, 25200-056) 6) DPBS(HyClone,SH30028.01B) 7) dd H2O 8) 75%酒精
二、器械
1) 手术器械:眼科剪x2、眼科镊直、弯各x2、显微镊x2(金钟,WA3050)、显微剪x1 2) 100 ml小烧杯 3) 200目不锈钢筛 4) 细胞计数器(求精)
5) 50ml离心管(Corning,430828)、15ml离心管(Corning,430790) 6) 25ml培养瓶(Corning,430639)或75ml培养瓶(Corning,430641) 7) 100ml玻璃瓶(蜀牛)
8) 直径为60mm的培养皿(LabServ,310109010) 9) 3ml移液管(Biologix, 30-0138A1) 10) 过滤器(Millex-GP, SLGP033RB) 11) 注射器:50ml、5ml各 1 12) Pipette and pipette tips 13) 冰袋、手套、口罩
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Day 1
1、消毒
1.1 将解剖器械、枪头高温高压消毒15分钟,消毒结束后放入烘箱中烘干待第二天使用。
1.2 打开操作台紫外线灯消毒30分钟。
2、包被培养板
2.1 戴手套,用酒精棉球擦拭操作台、移液枪,点燃酒精灯。 2.2 取PLL,用DPBS将其稀释至100μg/ml。
2.3 以PLL包被培养瓶,量以覆盖培养瓶底面为宜。25ml培养瓶:3ml;75ml培养瓶:8ml。过夜。
3、配置培养基、消化酶 3.1 DMEM with 10% FBS FBS:DMEM=1:10
取FBS 8ml、DMEM 80ml加入100ml高温高压过的玻璃瓶中。 3.2 0.125%胰酶
取0.25%Trypsin-EDTA,用DPBS稀释2倍。
将配置好的培养基、消化酶放入4°C冰箱中,待第二天使用。 4、消毒
操作台使用完毕后清理垃圾,用酒精棉球擦拭操作台、移液枪,关闭酒精灯,打开紫外线灯消毒30分钟。
Day 2
1、消毒
打开操作台紫外线灯消毒30分钟。 2、洗板
用ddH2O洗涤3 x 5 min,放入培养箱中晾干。
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3、解剖新生鼠(所有操作在冰袋上进行)
3.1 将出生24小时之内的新生鼠在100ml烧杯中用75%酒精浸泡5min。 3.2戴手套,用酒精棉球擦拭操作台、移液枪,点燃酒精灯。 3.3 取2个培养皿,内乘HBSS,放置在冰袋上。 3.4 剪去新生鼠的头,将头放入一个培养皿中。
3.5 用眼科剪把新生鼠头骨剪开,取出脑组织,将脑组织放入另一乘HBSS的培养皿中(将所有的新生鼠都同样处理)。
3.6 用两支显微镊分离脑膜,尽可能的去掉所有的血管和血管膜,将分离好的脑组织放入另一新的内乘HBSS的培养皿中。
3.7 将分离好的脑膜用显微剪剪碎脑组织,约1mm3。 4、接种细胞
4.1 用移液管将剪碎的脑组织移入两个15 ml离心管中。
4.2 每支离心管加入3 ml 0.125%胰酶,摇匀,37℃消化15分钟(为增加接触面积消化更充分可将离心管平放,也可以用60 mm培养皿消化。) 4.3 消化期间整理操作台。
4.4 消化15min后,用移液管除去胰酶,每支离心管加入2 ml 10% FBS/DMEM终止消化。 4.5 吹打:用1 ml枪头,吹打40次,静止2分钟,将上面液体移入一新的15ml离心管中。下面沉淀的细胞团块不要丢弃,加入1-1.5ml10% FBS/DMEM吹打20次,重复上面的步骤。一共这样分次吹打3次。3次之后如果还有团块在下面,果断丢弃。(吹打时候要注意,切忌过快,要缓慢吹打。吸入时候要很缓慢,吹出的时候可以略快,但是也要缓慢。) 4.6 过筛网至60 mm培养皿中。
4.7 将培养皿中液体移入2支15 ml离心管中。 4.8 离心:800g/min,5min。
4.9 弃上清,沉淀的细胞加10%FBS/DMEM 3ml重悬,轻柔吹打100次(具体吹打次数据细胞计数时看到的情况而定,若看到大量细胞团,应加大吹打次数)。 4.10 用细胞计数板计数:细胞浓度 = (4个大格细胞总数/4) × 104 /ml
4.11 调浓度,接种。接种后摇晃培养板摇匀细胞(注意不要圈圈摇晃,圈圈摇晃会导致神经元都集中到培养板的孔中间,导致浓度不均,生长不均匀。要左右平行翻转角度,然后前后平行翻转角度)。 具体细胞接种数值:
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25cm2培养瓶
培养液体积(ml/瓶) 4ml 15ml
细胞密度(个/ml) 1x106 1x106
总细胞数(个/瓶) 4x106 6-8x106
75 cm2培养瓶 5、消毒
实验结束后清理垃圾,清洗器械,用酒精棉球擦拭操作台、移液枪,关闭酒精灯,打开紫外线灯消毒30分钟。 6、换液
细胞种植成功后24小时全量换液,以后每天观察细胞生长状态,每 3天半量换液。注意:换液前要将10%FBS/DMEM放入37℃细胞培养箱中预热半小时。 7、传代
7.1待细胞长到第10天或看到细胞细胞爬满培养瓶的90%左右时,在37℃恒温摇床200g/min震荡12-14小时,全量换液。
7.2震荡过后,弃培养基,DPBS洗涤2-3次,加入适量0.25%胰酶,37℃消化1-3min(以镜下看到细胞突触回缩为最佳)。
7.3加入2ml培养基中和胰酶,用移液管轻轻吹打细胞壁,使贴壁细胞脱落。 7.4将培养基移入15ml离心管中,200g/min离心5min,弃上清。 7.5加入新的培养基,吹打100次,使细胞散开。
7.6将细胞移入培养皿中,孵箱培养10-15min后,将皿中培养液移至新的培养瓶中(不用包被)。
7.7每天观察细胞生长状态,每3天半量换液,待细胞爬满培养瓶的90%左右,可继续传代或消化后将细胞接种在爬片中,进行下一步实验。
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