考马斯亮蓝法(Bradford法)测定蛋白质浓度
1、试剂:
(1)考马斯亮蓝试剂:
考马斯亮蓝G—250 100mg溶于50ml 95%乙醇,加入100ml 85% H3PO4,用蒸馏水稀释至1000ml,滤纸过滤.最终试剂中含0.01%(W/V)考马斯亮蓝G—250,4.7%(W/V)乙醇,8.5%(W/V)H3PO4.
(2)标准蛋白质溶液:
纯的牛血清血蛋白,根据其纯度同0.15mol/L NaCl配制成100 ug/ml蛋白溶液.
2.器材:\\x0b(1)可见光分光光度计 (2)旋涡混合器
3、标准曲线的制作
试管编号\\x050\\x051\\x052\\x053\\x054\\x055\\x056
100ug/ml标准蛋白(ml)\\x050.0\\x050.1\\x050.2\\x050.3\\x050.4\\x050.5\\x050.6
0.15mol/L NaCl (ml)\\x051\\x050.9\\x050.8\\x050.7\\x050.6\\x050.5\\x050.4
考马斯亮蓝试剂 (ml)\\x055\\x055\\x055\\x055\\x055\\x055\\x055
摇匀,1h内以0号管为空白对照,在595nm处比色\\x05\\x05\\x05\\x05\\x05\\x05\\x05
A595nm\\x05\\x05\\x05\\x05\\x05\\x05\\x05
以A595nm为纵坐标,标准蛋白含量为横坐标(六个点为10ug、20 ug、30 ug、40 ug、50 ug、60 ug),在坐标轴上绘制标准曲线.
4、样品中蛋白质含量的测定
另取两支干净的试管(做一重复),加入合适浓度的待测样品,使其测定值在标准曲线的范围内,测定方法同上,由样品液的吸光度查标准曲线即可求出含量.
注意事项:
1、 如果要求严格,最好在试剂加入后的5~20min内测定光 吸收,因为这段时间内颜色是最稳定的.
2、 若选择在旋涡混合器上混合,注意不要太剧烈,以免产生大量气泡而难于消除.
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