研究报告
分光光度法测定保健食品中总黄酮
孔鲁裔
(国家农业标准化监测与研究中心黑龙江)
摘要 研究各种操作条件对分光光度法测定保健食品中总黄酮的影响, 得到了较有价值的结论。关键词 总黄酮;保健食品;分光光度法
1 前言
总黄酮是很多保健食品中的重要功效成份,能促进胰岛素的亲和力,在降压、降脂、降血糖方面有显著效果,同时还具有增强毛细血管通透性等作用。因此,测定其含量对于保健食品的品质和功效具有重要的意义。但目前国内还没有保健食品中总黄酮测定方法的国家标准。国内外对保健食品中总黄酮的测定,考虑到方法的简便、快捷以及平行性,多采用在碱性介质中加铝盐显色的分光光度法。但是,总黄酮这种天然植物的组分非常复杂,分光光度法在实测过程中会产生各种干扰,影响结果的准确性,本方法有针对性地对此开展了研究,进行了创新并取得了较好的结果,建立了一个高效、准确的测定方法。
目前总黄酮的分析方法国外报道的有溶剂抽提法、聚酰胺薄层分析法等。但是,柱法操作复杂、时间长,难以避免实测过程中会产生各种干扰。因此比较而言,本方法立足于用常规的化学及物理检测方法,采用了超声波提取、聚酰胺吸附法经过改进系统,试验得到了快速、简易、良好的效果,在实际测定、应用中,具有更大的意义。
d)1 mol/L氢氧化钠溶液:称取4.00 g氢氧化钠,加水至100ml,溶解混匀。
e)10%硝酸铝溶液:称取10.00 g硝酸铝,加
水至100ml,溶解混匀。
f)30 %乙醇溶液:吸取30.0ml无水乙醇,加水至100ml,溶解混匀。
g)芦丁标准对照品:99.5%
h)芦丁标准溶液:精确称取经105℃干燥至恒重并按其纯度折算为100 %质量的芦丁标准对照品0.0150 g,加无水甲醇溶解并定容至100ml,此溶液浓度为150 μg/ml,0℃~4℃密封保存,保存期为两个月。
2.1.2 仪器设备
a) 天平:感量0.1 g和0.0001 g。b)分光光度计。c)超声波发生器。d)恒温水浴锅。
e)涡旋混合器。
f)抽滤装置:真空泵、抽滤瓶、布氏漏斗、定量滤纸。
g)层析柱:20 cm以上内径为1 cm的玻璃管。h)蒸发皿:规格100ml。i)具塞比色管:规格10ml和50ml。2.2 操作步骤2.2.1 提取2.2.1.1 固体样品
取有代表性样品, 1 g~5 g(精确至0.01 g)于50 ml具塞比色管中,加入30 ml无水乙醇,涡旋混匀3 min。超声提取30 min,抽滤,用无水乙醇淋洗比色管、残渣及抽滤瓶,收集全部滤液于100 ml蒸发皿中,加1 g聚酰胺粉,缓慢摇匀。于50 ℃水浴上挥去乙醇。
2 检测方法
2.1 试剂与仪器2.1.1 试剂与材料
a)无水甲醇、无水乙醇、亚硝酸钠、硝酸铝、氢氧化钠、三氯甲烷,均为分析纯,以下用水除特殊说明外,均为GB/T 6682-2008中规定的三级水。
b)聚酰胺粉:过80目~100目筛。
c)5 %亚硝酸钠溶液:称取5.00 g亚硝酸钠,加水至100ml,溶解混匀,当天配制。
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2.2.1.2 液体样品
取有代表性样品,1 ml~10 ml(精确至0.1 ml)于50 ml具塞比色管中,加入30 ml无水乙醇,涡旋混匀3 min。超声提取30 min,抽滤,用无水乙醇淋洗比色管、残渣及抽滤瓶,收集全部滤液于100 ml蒸发皿中,加1 g聚酰胺粉,缓慢摇匀。于50℃水浴上挥去乙醇,再调节水浴至80℃蒸干。2.2.2 净化
在层析柱下端填入少量脱脂棉。用75 ml三氯甲烷将蒸发皿中的残留物全部转入层析柱中,洗去脂肪,弃去滤液。用40 ml无水甲醇再次冲洗蒸发皿,并转入层析柱中,控制洗脱流速小于60 d/min,收集全部洗脱液于50 ml容量瓶中,用无水甲醇定容至刻度,待测。
2.2.3 标准工作曲线的配制及测定
分别吸取标准溶液0 ml、0.5 ml、1.0 ml、2.0 ml、3.0 ml、4.0 ml,相当于芦丁含量为0 μg、75 μg、150 μg、300 μg、450 μg、600 μg,分别置于6个10 ml刻度比色管中,加入30%乙醇溶液至 5 ml。各加5 %亚硝酸钠溶液0.3 ml,振摇后放置5 min。加入10%硝酸铝溶液0.3 ml,摇匀后放置6 min。加1.0 mol/L氢氧化钠溶液2 ml, 用30 %乙醇定容至刻度,摇匀,以零管为空白,用1 cm比色皿,在502nm处进行吸光度测定(比色测定操作须在60 min内完成),并绘制芦丁含量(μg)与吸光度的标准曲线。2.2.4 样品的测定
根据样品中总黄酮含量,取待测液1 ml~5 ml(精确至0.1 ml)于10 ml刻度比色管中,以下按标准曲线的测定(2.2.3)操作步骤进行测定。同时另取同体积未加铝盐试剂的样液(补加0.3 ml水),作为样品基体空白,与标准工作曲线相比较定量。2.3 结果计算
样品中总黄酮的含量(以芦丁计)按式(1)计算:
……………………(1)式中:
X —样品中总黄酮的含量(以芦丁计),单位为克每100克或克每100毫升(g/100g或g/100ml);
C —从标准曲线上查得的被测液中总黄酮含量,单位为微克(μg);
C0—从标准曲线上查得的被测液中样品基体空白30
含量,单位为微克(μg);
V2—样品定容体积,单位为毫升(ml);V1—取待测液体积,单位为毫升(ml);m—称取样品质量或体积,单位为克或毫升(g或ml)。
计算结果保留至小数点后两位。
3 方法的主要技术研究过程
3.1 测定原理
根据资料,将样品中黄酮类化合物进行提取纯化后,黄酮类化合物中的3-羟基,4-羟基或5-羟
基,4-羰基或邻二位酚羟基,与铝盐进行络合反应,在碱性条件下生成红色的络合物。用分光光度法于502 nm波长下测定其吸光度,与芦丁标准对照品比较,进行待测物中总黄酮的定量测定。3.2 对样品中总黄酮的提取工艺的研究
总黄酮(Flavonoids)是具有苯骈吡喃环结构的一类天然化合物的总称,基本母核可认为是无苯基色原酮,广泛的存在于天然植物中,组分非常复杂。一般都具有4位羰基,大多数以苷的形式存在且呈现黄色。有的具有良好的心脑血管药理活性,有的具有抗菌消炎作用,有的具有保肝作用。黄酮类化合物是用有机溶剂从植物中提取,再经纯化、干燥所得的黄色粉状品,是一种天然化合物,在食品加工中是很多保健食品添加的重要功效成份。
总黄酮纯化过程中多以乙醇提取为佳。其根本原因,是由于黄酮类化合物中的游离苷元难溶或不溶于水,但易溶于乙醇,因此常用不同浓度的乙醇提取总黄酮;而黄酮类化合物中的黄酮苷类一般可溶于水也可溶于醇,因此也可用水或不同浓度的乙醇提取。而且,用水煎煮提取,亦将蛋白质、糖类等水溶性杂质一同提出,可用醇沉法、丁醇萃取法、聚酰胺柱层析法进行分离纯化,过程比较复杂;用乙醇提取,亦将树脂、蜡质、叶绿素、植物甾醇等脂溶性杂质提出,可用水沉法、碱溶酸沉法、丁醇萃取法、聚酰胺吸附层析法、交联PVP吸附层析法等分离纯化,过程相对简单。
上述是一般情况,对某一含黄酮的具体保健品而言,应根据所含黄酮的水溶性及其含量的多少,除黄酮外的其有效部分及其性质、所含蛋白质、鞣质、树脂等杂质的情况以及药材所属植物部位不同(全草、根、茎、叶)等具体情况设计出不同的
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溶剂提取和不同的分离纯化工艺,经筛选试验,最终才能获得适宜的溶剂提取工艺和分离纯化工艺。3.3 对样品中总黄酮提取条件的选择
以下选取以银杏叶、淫羊霍、黄芩为主要成分的三种有代表性的总黄酮保健食品为例,尽管以上三位药均含黄酮为主要有效成分,但由于在加工过程中使用的药用部位的不同(银杏叶使用的药用部位是叶,淫羊霍为全草、黄芩为根茎),加工过程中提取溶剂和提取工艺的不同,加工过程中分离纯化工艺的亦不同,导致在实验中得到的结果略有差异,见表1提取条件的选择。
例如,银杏叶胶囊除含黄酮有效成分外,还含有难溶于水的萜类内酯有效成分,银杏叶既含有游离黄酮也含有黄酮苷,因此,不宜用水提取,经试验,用水煎煮提取3次,黄酮的提取率仅为45%左右;用70%乙醇回流提取2h,75%乙醇和无水乙醇超声提取30min,总黄酮提取率才可达90%以上
酮,一般都具有4位羰基,大多数以苷的形式存在且呈现黄色。而其组分非常复杂,含有大量未知成分(目前还没有任何科学手段能对其全部组分进行测定)。选用芦丁作总黄酮的标准对照品,是因为芦丁不但有较优的化学稳定性,且其组份与大多数总黄酮类化合物最为接近,其在光谱扫描中的特征吸收区与总黄酮类化合物也最为接近。那么,在目前的科学手段还无法全部的测定总黄酮组分时,只能以选取一种最接近其组成的标准对照品来参照标定其含量。所以,在本标准的制定中,我们选用芦丁作为标定总黄酮的标准对照品(本标准测定的总黄酮含量以芦丁计)。3.5 测定波长的选择
由于黄酮类化合物中的3-羟基,4-羟基或5-羟基,4-羰基或邻二位酚羟基,与铝盐进行络合反应,在碱性条件下生成稳定的红色络合物。所以,对芦丁标准品、和含有总黄酮的保健品样品,经显色后进行紫外光谱分析扫描,如图1、图2、图3,由于总黄酮和保健品中组份都很复杂,可见在278nm~440nm处有较大干扰,所以选其最佳吸收峰为502nm。
图1 芦丁标准品紫外光谱扫描图
表1 提取条件的选择
所以根据试验结果,对某一含总黄酮的具体成分而言,应根据所含黄酮的水溶性及其含量的多少,除黄酮外的其有效部分及其性质、所含蛋白质、鞣质、树脂等杂质的情况以及药材所属植物部位不同(全草、根、茎、叶)等具体情况综合选取提取溶剂,经以上筛选试验,最终获得最适宜的溶剂提取条件为,用无水乙醇超声提取30min。3.4 标准对照品的选择
芦丁属黄酮类,带有明显的黄酮苷集团,是目前国际上最常用的标定总黄酮的标准对照品。由于,总黄酮(Flavonoids)是具有苯骈吡喃环结构的一类天然化合物的总称,基本母核可认为是无苯基色原
图2 银杏叶胶囊紫外光谱扫描图
图3 黄芩口服液紫外光谱扫描图
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3.6 线性相关性、标准曲线配制、线性方程及相关系数
确定标准溶液的配制方法,并配制不同浓度的标准溶液进行测定,画出不同浓度范围内的标准曲线,计算其相关系数。3.6.1 标准溶液的配制
3.6.1.1 标准溶液的配制方法(同2.1.1中h)芦丁标准溶液的配制)
3.6.1.2 标准溶液的稳定性试验
将浓度为150μg/ml的芦丁标准溶液,在0℃~4℃密封条件下保存,每次测定前取出,恢复到室温,吸取1cm与铝盐进行络合反应,在碱性条件下生成稳定的红色络合物,在502nm处进行吸光度测定(同2.2.3),与标准曲线相比较定量,并计算回收率,如表2。结果表明,浓度为150μg/ml的芦丁标准溶液,在0℃~4℃密封条件下保存,最佳保存时间为两个月。
表3 显色剂用量的选择及稳定性情况
所得结果表明,最佳的显色剂用量和放置时间
表2 标准溶液的稳定性试验
为:加5%亚硝酸钠溶液0.3ml,振摇后放置5min,加
入10%硝酸铝溶液0.3mL,摇匀后放置6min,加1.0mol/L氢氧化钠溶液2ml。
②总黄酮在不同溶剂中的吸收情况
吸取150μg/ml的总黄酮标准溶液4ml于3个10ml比色管中,各加5%亚硝酸钠溶液0.3ml,振摇后放置5min,加入10%硝酸铝溶液0.3ml,摇匀后放置6min,加1.0mol/L氢氧化钠溶液2ml,各加入无水乙醇、无水甲醇、30%乙醇定容至刻度,以试剂空白为空白,摇匀后于502nm处用1cm比色杯测定其吸光值,如下表4。
3.6.2 标准工作曲线的配制及测定
3.6.2.1 对标准工作曲线配制条件的验证
确定标准曲线的含量范围0μg~600μg,取600μg为测定峰值,分别确定亚硝酸钠、硝酸铝溶液 、氢氧化钠、乙醇加入的量对显色和测定的影响进行验证:
①显色剂用量的选择及稳定性试验吸取150μg/ml的总黄酮标准溶液4ml于10个10ml比色管中,各加一定量的5%亚硝酸钠溶液,振摇后放置一段时间,加入一定量的10%硝酸铝溶液,摇匀后放置一段时间,加一定量的1.0mol/L氢氧化钠溶液,各加入30%乙醇定容至刻度,以试剂空白为空白,摇匀后于502nm处用1cm比色杯测定其吸光值,如下表3。
表4 在不同溶剂中的吸收情况
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所得结果表明,在相同条件下总黄酮在30%乙醇溶剂中的吸光值最大测定灵敏度最高。
③显色后待测液的稳定性试验
吸取150μg/ml的总黄酮标准溶液10ml于10个50mL比色管中,各加5%亚硝酸钠溶液1.5ml,振摇后放置5min,加入10%硝酸铝溶液1.5ml,摇匀后放置6min,加1.0mol/L氢氧化钠溶液10ml,各加入无水乙醇、无水甲醇、30%乙醇定容至刻度,放置不同时间后,以试剂空白为空白,摇匀后于502nm处用1cm比色杯测定其吸光值,如下表5。所得结果表明,显色后须在60min内上机测定。
对其进行线性回归分析。回归方程为Y=0.0011x +0.0023,相关系数为R=0.9999。
3.7 对方法进行重现性、精密度和准确度的测试3.7.1 方法重现性和精密度的测试
分别吸取标准溶液(3.6.1.1)2.0ml(相当于芦丁含量为300μg)于 6个10ml刻度比色管中,加入30%乙醇溶液至5ml,摇匀(以下操作过程同3.6.2.2标准工作曲线的配制及测定)。分别以配制成的300μg标准溶液为进样溶液,6个样液按上述条件,测定其含量,计算标准偏差和相对标准偏差。所得结果表明本方法重现性好,达到一定的精密度,如表7。
表5 显色后待测液的稳定性情况
3.6.2.2 标准工作曲线的配制及测定结果
分别吸取标准溶液(3.6.1.1)0 ml、0.5 ml、1.0 ml、2.0ml、3.0ml、4.0ml,相当于芦丁含量为0、75μg、150μg、300μg、450μg、600μg移入10ml刻度比色管中,加入30%乙醇溶液至5mL,摇匀。再各加5%亚硝酸钠溶液0.3ml,振摇后放置5min,加入10%硝酸铝溶液0.3mL,摇匀后放置6min,加1.0mol/L氢氧化钠溶液2ml,用30%乙醇定容至刻度。以零管为空白,摇匀后用1cm比色杯,在502nm处进行测定吸光度(比色测定操作须在60 min内完成),绘制芦丁含量(μg)与吸光度的标准曲线,如表6、图4。
表7 方法重现性和精密度的测试
3.7.2 方法的准确度
根据上述测定结果,已知6个样液配制含量为300μg,计算测定值与真实值的绝对误差和相对误差。所得结果表明本方法的准确度良好,如表8。
表6 标准曲线系列方程及相关系数
表8 方法的准确度计算
3.8 样品处理条件的选择
3.8.1 水浴温度的选择
3.8.1.1 在水浴上挥去乙醇的最佳温度
选取四种有代表性的已知含量样品,在不同温
图4 标准曲线
3.6.3 线性关系
以吸光值为纵坐标,芦丁标准品含量为横坐标
度的水浴条件下,挥去乙醇,观察现象并测定其含量,计算其回收率,如表9。结果表明在50℃水浴上挥去乙醇,测定总黄酮效果最好。
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中,分别加入的0.5、1.0、2.0、3.0g聚酰胺粉。充分搅拌2min后,分别用约10ml无水乙醇分几次充分洗涤烧杯转移至100蒸发皿中,缓慢摇匀,于50℃水浴上挥去醇类溶剂后,转入层析柱。先用75ml三氯甲烷洗去脂肪,并弃去滤液。然后用无水甲醇洗脱,收集此滤液并定容至50ml待测。
移取上述待测液1ml于10ml刻度比色管中,加入30%乙醇溶液至5ml,各加5%亚硝酸钠溶液0.3ml,振摇后放置5min,加入10%硝酸铝溶液0.3ml摇匀后放置6min,加1.0mol/L氢氧化钠溶液2ml,用30%乙醇定容至刻度,以试剂空白为空白,摇匀后于502nm处用1cm比色杯测定其吸光值(比色测定操作须在60min内完成),并与标准曲线相比较定量、计算其回收
表9 挥去乙醇的水浴温度试验
率。结果表明用1.0g聚酰胺粉吸附总黄酮,效果最好,如表11。
3.8.1.2 液体样品在水浴上除去水分的最佳温度
选取四种有代表性的液体样品(已知含量),经无水乙醇超声提取30min,抽滤并转移滤液于100ml蒸发皿中,加入1g聚酰胺粉摇匀,分别在50℃水浴上挥去乙醇后,在不同温度的水浴上除去水分,观察现象、计算回收率。结果表明在80℃水浴上除去水分,测定总黄酮效果最好,如表10。
表11 吸附剂用量对回收率的影响
3.8.3 对去脂肪净化溶剂的选择及用量3.8.3.1 对去脂肪净化溶剂的选择
选取四种有代表性的样品(已知含量),经无水乙醇超声提取30min,抽滤并转移滤液于100ml蒸发皿中,加入1g聚酰胺粉摇匀,分别在50℃水浴上挥去乙醇,液体样品另在80℃的水浴上除去水分后,转入层析柱。用过量的不同溶剂洗去脂肪,并弃去滤液。然后用无水甲醇洗脱,收集此滤液并定容至50ml待测。
移取上述待测液1ml于10ml刻度比色管中,加入30%乙醇溶液至5ml,各加5%亚硝酸钠溶液0.3ml,振摇后放置5min,加入10%硝酸铝溶液0.3ml摇匀后放置6min,加1.0mol/L氢氧化钠溶液2ml,用30%乙醇定容至刻度。同时另取同体积未加铝盐试剂的样液
表10 除去水分的水浴温度试验
(补加0.3 mL水),作为样品基体空白。摇匀后于502nm处用1cm比色杯测定其吸光值,并与标准曲线相比较定量、计算其回收率。结果表明,用三氯甲烷去脂肪后,测定总黄酮效果最好,如表12。
3.8.2 吸附剂用量的选择
分别吸取500μg/ml的芦丁标准溶液(配制方法同3.6.1.1标准溶液的配制)60ml于4个100ml烧杯34
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分别吸取500μg/ml的芦丁标准溶液(配制方法同3.6.1.1 标准溶液的配制)60ml于3个100ml烧杯中,分别加入1.0g聚酰胺粉。充分搅拌2min后,分别用约10ml无水乙醇分几次洗涤烧杯,转移至100ml蒸发皿中,缓慢摇匀,于50℃水浴上挥去醇类溶剂后,转入层析柱。先用75ml三氯甲烷洗去脂肪,并弃去滤液。然后分别用以下几种解吸液洗脱,控制洗脱流速小于60d/min,收集此滤液并定容至50ml待测。
移取上述待测液1ml于10ml刻度比色管中,加入30%乙醇溶液至5ml,各加5%亚硝酸钠溶液0.3ml,振
表12 不同去脂肪溶剂用量对回收率的影响
摇后放置5min,加入10%硝酸铝溶液0.3ml摇匀后放置6min,加1.0mol/L氢氧化钠溶液2ml,用30%乙醇定容至刻度,以试剂空白为空白,摇匀后于502nm处用1cm比色杯测定其吸光值,并与标准曲线相比较定量、计算其回收率,结果如表14。
3.8.3.2 对三氯甲烷用量的选择
选取四种有代表性的样品(已知含量),向固体样品中加入5.0g油脂,液体样品中加入10ml油脂(称质量为5.6g),混匀后经无水乙醇超声提取30min,抽滤并转移滤液于100ml蒸发皿中,加入1g聚酰胺粉摇匀,分别在50℃水浴上挥去乙醇,液体样品另在80℃的水浴上除去水分后,转入层析柱。用不同量的三氯甲烷洗去脂肪,并收集滤液。将三氯甲烷滤液在水浴上旋转蒸干,计算洗去的脂肪质量,并计算脂肪回收率。结果表明,用75ml三氯甲烷去脂肪效果最好,如表13。
表14 其它不同解吸液中的解吸附情况
所的结果表明,前两种解吸液都可使用,第三种解吸液滤液回收率较低且易产生混浊影响比色。本实验选用第一种解吸液,无水甲醇溶液。3.8.4.2 解吸溶剂用量的选择
分别吸取500μg/ml的芦丁标准溶液(配制方法同3.6.1.1标准溶液的配制)60ml于4个100ml烧杯中,分别加入1.0g聚酰胺粉。充分搅拌2min后,分别用约10ml无水乙醇分几次洗涤烧杯,转移至100蒸发皿中,缓慢摇匀,于50℃水浴上挥去醇类溶剂后,转入层析柱。先用75ml三氯甲烷洗去脂肪,并弃去滤液。然后分别用以下几种解吸液洗脱,控制洗脱流速小于60d/min,收集此滤液并定容至50ml待测。
移取上述待测液1ml于10ml刻度比色管中,加入30%乙醇溶液至5ml,各加5%亚硝酸钠溶液0.3ml,振摇后放置5min,加入10%硝酸铝溶液0.3ml摇匀后放置6min,加1.0mol/l氢氧化钠溶液2ml,用30%乙醇定
表13 三氯甲烷用量的选择
容至刻度,以试剂空白为空白,摇匀后于502nm处用1cm比色杯测定其吸光值,并与标准曲线相比较定量、计算其回收率。结果表明,用40ml无水甲醇,控制洗脱流速小于60d/min,洗脱效果最好,如表15。
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3.8.4 解吸溶剂的选择和用量
3.8.4.1 解吸溶剂的选择
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3.9.4 样品准确度的测定
针对以上已知含量的样品进行多次测量,计算其准确度。所得结果表明,本方法测定的样品准确度良好,如表18。
表15 不同用量解吸液的解吸附情况
3.9 样品含量、样品重现性、精密度及准确度的测定3.9.1 样品含量的测定
选择有代表性的四种样品,用以上(2.2)确定的外标法重复测定其总黄酮含量数次,求平均值,如表16。
表18 样品的准确度计算
表16 样品重现性的测试
3.9.2 样品重现性和精密度的测定
针对以上测得的数据,计算样品标准偏差和相对标准偏差。所得结果表明,本方法测定的样品重现性和精密度良好,如表17。
3.10 对样品进行回收率测试
针对样品加入不同浓度的标准物质,按以上方法进行处理并测定其含量,计算回收率,结果表明样品均能达到一定的回收率如表19、20。
表19 样品第一次加标的回收率计算
4 方法定量限和检出限的测定
表17 样品精密度的测试
4.1 方法检出限的测定
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表22 方法定量限的测定
5 误差讨论
对于含葡萄、山楂等有色水果为原料的样品,必须用未加铝盐试剂的样液为空白或采用标准加入法进行测定,以避免样液颜色对测定干扰而引起结果偏高。参考文献
表20 样品第二次加标的回收率计算
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表21 方法检出限的测定
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将150μg/mL标准溶液逐级稀释至1μg/mL,测定
本标准检出限为5μg/mL,如表21。
4.2 方法定量限的测定
将标准品逐级稀释添加到空白样品中,按标准方法进行提取、测定,最终确定本标准检出限为25μg/g,如表22。
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我国国家环保标准突破1100项
从全国环保科技工作会议上获悉,2008年我国共完成123项国家环保标准的制订、修订工作,现行国家环保标准突破1100项,环保标准体系建设工程取得巨大进展。
据环境保护部副部长吴晓青介绍,2008年我国完成了声环境质量标准和工业企业、社会生活噪声排放标准及铁路边界噪声标准的修改方案,一揽子解决了长期困扰我国环境噪声监管工作的一些“老大难”问题,规范和促进了噪声污染防治工作。
地方环保标准制订也取得进展。河北、上海、山东分别制订了当地环保标准规划,内蒙古、黑龙江、吉林、上海、福建等省(区、市)发布了一系列地方环保标准,形成了具有地方特色的标准体系。
据了解,为适应开展氮氧化物排放削减和控制的需要,今年环保部门将尽快制订氮氧化物排放标准,出台氮氧化物污染防治技术政策。
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